可能很多讀者對細胞的凍存復蘇的實(shí)驗操作與步驟心存疑慮,在這里給大家介紹一些關(guān)于細胞凍存復蘇方面的理論知識。
基本概念:存活率與恢復率
細胞凍存復蘇的質(zhì)量可以通過(guò)存活率(viability)來(lái)衡量。即在細胞復蘇、洗滌后,用臺盼藍進(jìn)行細胞計數。存活率 = 活細胞數 / 細胞總數×100%。經(jīng)臺盼藍染色,活細胞呈無(wú)色,晶瑩透亮;死細胞呈藍色,暗淡無(wú)光,直徑比活細胞大1-2倍。
一般來(lái)說(shuō),如果細胞的存活率低于70%,ELISPOT檢測結果會(huì )很糟糕。補救辦法是讓細胞休息過(guò)夜,或者采用預孵育ELISPOT方法(見(jiàn)4.6節),檢測結果會(huì )有改善。如果細胞存活率高于80%會(huì )獲得較滿(mǎn)意的ELISPOT結果。如果嚴格按本實(shí)驗規范,可以保證存活率達90%。在此存活率下,復蘇細胞可以直接做ELISPOT檢測,不需休息過(guò)夜。
與存活率相關(guān)聯(lián)但又有顯著(zhù)區別的另一個(gè)概念是恢復率(recovery)?;謴吐适侵竷龃?、復蘇之后回收到的活細胞和凍存前活細胞的比例?;謴吐实母叩腿Q于兩個(gè)影響因素,即存活率和洗滌丟失比例。使用本試劑盒,細胞的存活率很高,它對恢復率的影響可以忽略。所以對恢復率的主要影響因素是洗滌過(guò)程中細胞的丟失。本操作手冊中有兩步洗滌,推薦的離心條件是400g離心10min,按照這種操作,細胞的丟失應該在可接受的范圍之內。同時(shí)我們推薦較高的細胞凍存濃度,即1x107cells/ml,甚至可以更高。如果細胞達不到這種濃度,也至少應該達到5×106cells/ml。
細胞為什么會(huì )被凍死?
使細胞死亡的原因并不是低溫,相反,低溫可以減緩甚至暫停細胞生命運動(dòng),使其長(cháng)期保存。讓細胞死亡的真正原因是水。不錯,正是水分。水分在冷凍的過(guò)程中會(huì )結冰,從而給細胞帶來(lái)雙重傷害。
第一重傷害在于水結冰的過(guò)程。我們知道,冰是一種晶體。結冰的過(guò)程,就是水分子不斷的填充到冰晶的陣列當中,使冰晶體不斷長(cháng)大的過(guò)程??催^(guò)水晶的人對晶體都會(huì )有一種直觀(guān)認識,那就是晶體有非常分明的棱角,冰晶也是這樣。不論是細胞內、還是細胞外的冰晶,在生長(cháng)過(guò)程中能夠不斷的外延,很容易就會(huì )刺破細胞的各種生物膜,尤其是質(zhì)膜,從而導致細胞死亡。這是細胞被凍死的首要原因。
第二重傷害機制很好理解,那就是水在結冰的過(guò)程中,體積會(huì )增加1/10。體積膨脹伴隨的微觀(guān)運動(dòng)會(huì )使各種水合蛋白原子之間發(fā)生位移,化學(xué)鍵被扭曲,導致蛋白變性失活。各種蛋白制劑要避免反復凍融就是這個(gè)道理。體積膨脹伴隨的宏觀(guān)運動(dòng)會(huì )使各種封閉的細胞器、細胞核乃至整個(gè)細胞也跟著(zhù)膨脹,有可能在膨脹過(guò)程中發(fā)生生物膜破裂事件。由水的體積膨脹導致的傷害相對來(lái)說(shuō)居于次要地位。
這兩重傷害是如此的嚴重,以致于脆弱的哺乳動(dòng)物細胞如果不添加保護劑,幾乎都會(huì )在凍融的過(guò)程中死亡。那么,凍存保護劑又是什么東西呢?
凍存保護劑的原理是什么?
凍存保護劑分兩類(lèi),保護原理各不相同。第一類(lèi)稱(chēng)為細胞外保護劑,多是高分子物質(zhì),比如甲基纖維素,聚乙二醇(PEG),血清白蛋白等等;第二類(lèi)稱(chēng)為細胞內保護劑,比如甘油、二甲基亞砜(DMSO)等等。
第一類(lèi)保護劑的作用是分隔細胞外的溶液空間,阻止細胞外大冰晶的形成。因為細胞外保護劑都是高分子,一方面自身會(huì )結合大量自由的水分子,另一方面也會(huì )阻止未結合的自由水分子的運動(dòng),形成一個(gè)個(gè)相對阻隔的小空間。冰晶的形成與生長(cháng)就被限定在這樣一個(gè)個(gè)相互阻隔的小空間內,不能形成大的冰晶。也就是說(shuō),把原先少數大的冰晶分隔成了無(wú)數細微的小冰晶,極大地減少了對細胞膜的威脅。
第二類(lèi)保護劑能進(jìn)入細胞內,起到雙重保護效果。第一重保護效果是保護細胞蛋白質(zhì),減輕凍融作用對蛋白質(zhì)的損傷。因為內保護劑都是親水的小分子,可以取代蛋白質(zhì)表面的水合層,減輕水凍結膨脹造成的原子位移與化學(xué)鍵破壞。第二重保護是破壞細胞內冰晶的晶格結構,防止形成大的冰晶刺破細胞器與質(zhì)膜。我們知道,晶體的生長(cháng)是組成晶格的原子分子有序點(diǎn)陣堆積的結果。但是進(jìn)入細胞內的這些親水小分子可以取代水分子而堆積到冰晶的晶格中,造成晶體的結構缺陷。缺陷嚴重到一定程度,晶體就不再增長(cháng),對細胞結構的破壞也就降低了。另外還有證據表明,像DMSO可以起到水的結晶核作用,大量的結晶核相互競爭水分子,導致這些冰晶都長(cháng)不大。
U-Cytech Cryostar?凍存試劑是各種凍存保護劑的優(yōu)化與集大成者。重懸液中含有多種細胞外保護劑,2倍凍存液含同時(shí)含有細胞外凍存保護劑和細胞內凍存保護劑,可以保證凍存的合適效果。
為什么要慢凍快融?
除了凍存保護劑之外,冷凍和升溫的速度也直接影響細胞的存活率。做過(guò)細胞凍存復蘇的人都可能聽(tīng)說(shuō)過(guò)“慢凍快融”的原則。這條原則背后的科學(xué)道理是什么呢?
慢凍是為了減少細胞內的水分,從而降低水分結冰導致的傷害。為了說(shuō)清這個(gè)道理,需要一點(diǎn)點(diǎn)物理學(xué)知識。我們知道,水溶液結冰是一個(gè)溶質(zhì)溶劑相互作用的過(guò)程。溶液的濃度越高,開(kāi)始結冰的溫度(冰點(diǎn))就越低。溶液結冰時(shí),作為溶劑的水優(yōu)先結冰,同時(shí)把溶質(zhì)外排,這樣就導致溶質(zhì)的濃度越來(lái)越高。溶質(zhì)的濃度越高,則剩下的溶液要進(jìn)一步結冰,需要的溫度就更低,直到一個(gè)最終完全結冰的溫度(共熔點(diǎn))。也就是說(shuō),水溶液的結冰是一個(gè)溫度逐漸降低(從冰點(diǎn)最后降低到共熔點(diǎn))、溶液濃度逐漸升高的過(guò)程。
但是這樣的結冰過(guò)程也是有條件的,那就是外界的溫度不能急劇降低,讓溶劑結冰的時(shí)候,有足夠的時(shí)間把溶質(zhì)排除到冰體之外。否則,溫度降低太快,溶質(zhì)就會(huì )被困在溶劑中間一同凝固,這在物理學(xué)上叫玻璃化凝固,而非真正的結冰。慢凍就是為了讓凍存液真正結冰,結冰的過(guò)程中,凍存液的濃度會(huì )逐漸提高,滲透壓也逐漸提高,細胞內的水分就會(huì )逐漸滲透到細胞外,從而減弱細胞內水分結冰導致的傷害。
理論和實(shí)踐表明,細胞冷凍的速度控制在每分鐘降低1°C效果好。Nalgene公司的程序降溫盒“Mr. Frosty”放置在-70℃冰箱內能夠提供接近于1℃/min的降溫速度。此外還有專(zhuān)門(mén)的程序降溫儀也能?chē)栏窨刂苾龃婕毎慕禍厮俾?。我們不推薦任何傳統辦法,傳統辦法的人為因素太大,效果不穩定。
那么快融又是什么道理呢?快融是為了防止融解過(guò)程中的局部區域發(fā)生反復凍融。
DMSO的特殊性所帶來(lái)的特殊實(shí)驗操作
二甲基亞砜(DMSO)是一種有效的細胞內保護劑,Cryostar? 2×凍存液含有DMSO。DMSO具有脂溶性,細胞毒性,密度比水大。正是由于這些特殊性質(zhì),所以在細胞凍存復蘇中會(huì )有一些相應的特殊操作。
先說(shuō)脂溶性。DMSO能自由穿越細胞的脂質(zhì)雙分子層。穿透的速度取決于細胞內外兩側的濃度差。如果穿透速度太快,膜結構與膜蛋白都會(huì )受到損傷。所以,要控制細胞內外的DMSO濃度差,不能變化太劇烈。一方面,滴加凍存液時(shí),DMSO的濃度要緩慢增加;另一方面復蘇洗滌時(shí),DMSO的濃度要緩慢下降。這就是在凍存和復蘇程序中多處出現“逐滴加入”“緩慢加入”的原因。
接著(zhù)說(shuō)毒性。沒(méi)錯,DMSO確實(shí)有細胞毒性!但是它在凍存中能有效保護細胞,所以?xún)龃嬉憾茧x不開(kāi)DMSO,我們要做的只能是減少DMSO對細胞的毒性。我們都知道,溫度越低,細胞的生命活動(dòng)越弱,對有毒物質(zhì)的耐受就越強。凡是涉及到DMSO的地方我們都會(huì )提到“冰上操作”,用低溫來(lái)減弱DMSO的毒性,這就是原因所在。
最后說(shuō)密度。DMSO的密度大于水。Cryostar? 2×凍存液含有DMSO,所以它的密度大于普通培養基和血清。為了獲得充分的混合效果,一方面,在凍存程序中,Cryostar? 2×凍存液要滴加到Cryostar?重懸液液面之上,這樣高密度的Cryostar? 2X凍存液就能靠重力的作用和下面低密度的Cryostar?重懸液有效混合;另一方面,在復蘇程序中,低密度的血清和RPMI-1640培養基要緩慢加入到高密度凍存液液體的下方,這樣低密度的液體靠浮力作用就能和上方的細胞凍存液有效混合。